CTC Atlas
CTC Atlas to pierwsza ogólnodostępna platforma, która powstała dzięki zastosowaniu zaawansowanych technik obrazowania molekularnego, oferując niezwykle szczegółowy wgląd w biologię krążących komórek nowotworowych (ang. circulating tumor cells, CTC), ale też innych komórek potencjalnie związanych z rozwojem nowotworów (np. fibroblastów). To potencjalnie przełomowe narzędzie zostało opracowane z inicjatywy naszego Zespołu dzięki finansowaniu Ministerstwa Nauki i Szkolnictwa Wyższego. Atlas dostarcza wysokiej jakości dane wizualne i analityczne, umożliwiając badaczom i klinicystom lepsze zrozumienie biologii nowotworu. Wystarczy przewinąć galerię obrazów poniżej i kliknąć dowolny z nich, aby zobaczyć szczegółowy opis cech wybranej komórki i zastosowanej metodologii.

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata

Komórka nowotworowa
Prostata
Metodologia stojąca za Atlasem
Materiał biologiczny użyty do analizy pochodzi z krwi obwodowej lub drenującej guz chorych onkologicznych, zrekrutowanych do projektów badawczych po uzyskaniu od nich świadomej zgody na piśmie, zgodnie z protokołami zatwierdzonymi przez Niezależną Komisję Bioetyczną ds. Badań Naukowych przy Uniwersytecie Medycznym w Gdańsku. Krew pobierana jest do probówek EDTA i procesowana wg protokołu optymalnie w ciągu 3 godzin od momentu pobrania. Pierwsza frakcja pobranej krwi (ok. 2 ml) jest odrzucana, aby uniknąć zanieczyszczenia komórkami skóry (np. keratynocytami, fibroblastami) oraz komórkami śródbłonka podczas nakłucia. Komórki izolowane są metodą wirowania w gradiencie gęstości, co pozwala uzyskać frakcję jednojądrzastych komórek krwi zawierającą, między innymi, potencjalne krążące komórki nowotworowe. Następnie komórki te są utrwalane w 4% formaldehydzie i przechowywane w temperaturze –80 °C do momentu dalszych analiz.
Po rozmrożeniu i przepłukaniu w roztworze 1xPBS, aby usunąć formaldehyd, frakcje jednojądrzastych komórek krwi barwione są immunofluorescencyjnie przy użyciu dedykowanych przeciwciał wyselekcjonowanych tak by wykrywać markery włączające dla CTC (np. pan-keratyna), jak i co najmniej dwa markery wykluczające komórki krwi i inne normalne komórki mogące znajdować się we krwi (np. CD45 oraz CD31). Po dodatkowym przepłukaniu w 1xPBS komórki są zawieszane w 1xPBS, barwione DAPI i natychmiast analizowane przy użyciu obrazowego cytometru przepływowego (Amnis® ImageStream® X Mk II, Cytec Biosciences).
Atlas jest nieustannie rozbudowywany i aktualizowany o nowe obrazy oraz dane, które uwzględniają nowe cechy zidentyfikowanych komórek i nowe protokoły, w tym zawierające dodatkowe markery, co czyni go cennym źródłem wiedzy dla naukowców i lekarzy. Użytkownicy mogą przeglądać Atlas, aby odkrywać obrazy sklasyfikowane według typów komórek i ich cech, zdobywając wgląd w metody ich identyfikacji oraz potencjalne znaczenie diagnostyczne.
Bardziej szczegółowe informacje na temat poszczególnych protokołów barwienia CTC oraz innych komórek pochodzenia nowotworowego z różnych typów nowotworów można znaleźć w poniższych publikacjach. Uprzejmie prosimy użytkowników CTC Atlas o cytowanie tych publikacji przy odwoływaniu się do naszych danych:
Dla protokołu pan-K/vim/DAPI/CD45/CD31/α-SMA/CD29 i CTC fenotypowanych w raku piersi:
Muchlińska Anna, Wenta Robert, Ścińska Wiktoria, Markiewicz Aleksandra, Suchodolska Grażyna, Senkus Elżbieta, Żaczek Anna, Bednarz-Knoll Natalia. Improved characterization of circulating tumor cells and cancer-associated fibroblasts in one-tube assay in breast cancer patients using imaging flow cytometry. Cancers 2023, 15(16): 4169 (doi: 10.3390/cancers15164169)
Dla implementacji obrazowej cytometrii przepływowej w płynnych biopsjach:
Muchlińska Anna, Smentoch Julia, Żaczek Anna J, Bednarz-Knoll Natalia. Detection and Characterization of Circulating Tumor Cells Using Imaging Flow Cytometry—A Perspective Study. Cancers 2022, 14(17): 4178 (doi: 10.3390/cancers14174178)
Dla pomiarów cech morfologicznych CTC:
Wenta Robert, Richert Julia, Muchlińska Anna, Senkus Elżbieta, Suchodolska Grażyna, Łapińska-Szumczyk Sylwia, Domżalski Paweł, Miszewski Kevin, Matuszewski Marcin, Dziadziuszko Rafał, Supernat Anna, Żaczek Anna, Bednarz-Knoll Natalia. Measurable morphological features of single circulating tumor cells in selected solid tumors—A pilot study. Cytometry 2024, 105(12):883-892 (doi: 10.1002/cyto.a.24906)